2022 / 03

Следующая статья
DOI: 10.47183/mes.2022.027

ОРИГИНАЛЬНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ

Транскрипционная активность генов ДНК-метилтрансфераз у жителей Уральского региона, подвергшихся хроническому радиационному воздействию

В. С. Никифоров1,2, Е. А. Блинова1,2, А. В. Аклеев1,2
Информация об авторах

1 Уральский научно-практический центр радиационной медицины Федерального медико-биологического агентства, Челябинск, Россия

2 Челябинский государственный университет, Челябинск, Россия

Для корреспонденции: Владислав Сергеевич Никифоров
ул. Воровского, д. 68, корп. А, г. Челябинск, 454141, Россия; ur.liam@xvorofikin

Информация о статье

Финансирование: работа выполнена при финансовой поддержке Федерального медико-биологического агентства России (Государственный контракт № 27.501.21.2 от 11 июня 2021 г.).

Вклад авторов: В. С. Никифоров — выполнение лабораторных исследований, статистическая обработка результатов, написание статьи; Е. А. Блинова, А. В. Аклеев — планирование исследования, редактирование и подготовка окончательного варианта статьи.

Соблюдение этических стандартов: исследование одобрено этическим комитетом УНПЦ РМ ФМБА России (протокол №3 от 28 июня 2022 г.). Все пациенты подписали добровольное информированное согласие на участие в исследовании.

Статья получена: 29.06.2022 Статья принята к печати: 17.07.2022 Опубликовано online: 09.08.2022
|
  1. Arand J, Spieler D, Karius T, Branco MR, Meilinger D, Meissner A, et al. In vivo control of CpG and non-CpG DNA methylation by DNA methyltransferases. PLOS Genetics. 2012; (8): 1002750. DOI:10.1371/journal.pgen.1002750.
  2. Jeltsch A, Jurkowska RZ. New concepts in DNA methylation. Trends in Biochemical Sciences. 2014; 39 (7): 310–18. DOI: 10.1016/j.tibs.2014.05.002.
  3. Chaudhry MA, Omaruddin RA. Differential DNA methylation alterations in radiation-sensitive and -resistant cells. DNA and Cell Biology. 2012; 31 (6): 908–16. DOI: 10.1089/dna.2011.1509.
  4. López-Nieva P, González-Vasconcellos I, González-Sánchez L, Cobos-Fernández MA, Cobos-Fernández S, Pérez RS, et al. Differential molecular response in mice and human thymocytes exposed to a combined-dose radiation regime. Sci Rep. 2022; (12): 3144. DOI: 10.1038/s41598-022-07166-8.
  5. Chen B, Dai Q, Zhang Q , Yan P, Wang A, Qu L, et al. The relationship among occupational irradiation, DNA methylation status, and oxidative damage in interventional physicians. Medicine (Baltimore). 2022; 98 (39): e17373. DOI: 10.1097/ MD.0000000000017373.
  6. Peterson EJ, Bogler O, Taylor SM. p53-mediated repression of DNA methyltransferase 1 expression by specific DNA binding. Cancer Res. 2003; 63 (20): 6579–82.
  7. Armstrong CA, Jones GD, Anderson R, Iyer P, Narayanan D, Sandhu J, et al. DNMTs are required for delayed genome instability caused by radiation. Epigenetics. 2012; 7 (8): P. 892–902. DOI: 10.4161/epi.21094.
  8. Rugo RE, Mutamba JT, Mohan KN, Yee T, Greenberger JS, Engelward BP. Methyltransferases mediate cell memory of a genotoxic insult. Oncogene. 2011; 30 (6): 751–6. DOI: 10.1038/ onc.2010.480.
  9. Дегтева М. О., Напье Б. А., Толстых Е. И., Шишкина Е. А., Бугров Н. Г., Крестинина Л. Ю. и др. Распределение индивидуальных доз в когорте людей, облученных в результате радиоактивного загрязнения реки Течи. Медицинская радиология и радиационная безопасность. 2019; 64 (3): 46–53. DOI: 10.12737/article_5cf2364cb49523. 98590475.
  10. Degteva MO, Napier BA, Tolstykh EI, Shishkina EA, Shagina NB, Volchkova AYu, et al. Enhancements in the Techa River Dosimetry System: TRDS-2016D code for reconstruction of deterministic estimates of dose from environmental exposures. Health Physics. 2019; 117 (4): 378–87. DOI: 10.1097/HP.0000000000001067.
  11. Livak KJ, Schmittgen TD. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)). Methods. 2001; 25 (4): 402–8. DOI: 10.1006/meth.2001.1262.
  12. Svedruzic ZM. Dnmt1 structure and function. Prog Mol Biol Transl Sci. 2011; 101: 221–54. DOI: 10.1016/B978-0-12-387685-0.00006-8.
  13. Lee Y, Kim YJ, Choi YJ, Lee JW, Lee S, Cho YH, et al. Radiation-induced changes in DNA methylation and their relationship to chromosome aberrations in nuclear power plant workers. Int J Radiat Biol. 2015; 91 (2): 142–9. DOI: 10.3109/09553002.2015.969847.
  14. Cho YH, Jang Y, Woo HD, Kim YJ, Kim SY, Christensen S, et al. LINE-1 hypomethylation is associated with radiation-induced genomic instability in industrial radiographers. Environ Mol Mutagen. 2018; 60 (2):174–84. DOI: 10.1002/em.22237.
  15. Kuzmina NS, Lapteva NSh, Rubanovich AB. Hypermethylation of gene promoters in peripheral blood leukocytes in humans long term after radiation exposure. Environ Res. 2016; 146: 10–17. DOI: 10.1016/j.envres.2015.12.008.
  16. Кузьмина Н. С., Лаптева Н. Ш., Русинова Г. Г., Азизова Т. В., Вязовская Н. С., Рубанович А. В. Дозовая зависимость гиперметилирования промоторов генов в лейкоцитах крови лиц, подвергшихся сочетанному воздействию гамма- и альфаизлучений. Генетика. 2018; 54: S22–26. DOI: 10.1134/ S0016675818130118.
  17. Блинова Е. А., Никифоров В. С., Котикова А. И., Янишевская М. А., Аклеев А. В. Статус метилирования генов апоптоза и интенсивность апоптотической гибели лимфоцитов периферической крови у лиц, подвергшихся хроническому радиационному облучению. Молекулярная биология. 2022; 56 (5): 1–11.
  18. Никифоров В. С., Блинова Е. А., Аклеев А. В. Транскрипционная активность генов клеточного цикла и апоптоза у хронически облученных лиц, имеющих повышенную частоту TCR-мутантных лимфоцитов. Радиация и риск (Бюллетень национального радиационноэпидемиологического регистра). 2020; 29 (2): 89–100. DOI: 10.21870/0131-3878-2020-29-2-89-100.